Melyik a kanonikus transzkriptum? Egy klinikailag fontos kérdés állatmodellen való vizsgálata

Keszthelyi, Tália Magdolna [Keszthelyi, Tália Magdolna (molekuláris bioló...), szerző] MTA-SE Lendület Nephrogenetikai Kutatócsoport (SE / AOK / K / ISZGYK); Légrádi, Regina [Légrádi, Regina ((nephrogenetika)), szerző] MTA-SE Lendület Nephrogenetikai Kutatócsoport (SE / AOK / K / ISZGYK); Köles, Tímea; Minya, Patrícia; Pálya, Dóra [Pálya, Dóra (molekuláris bioló...), szerző]; Tory, Kálmán [Tory, Kálmán (gyermekgyógyászat...), szerző] I. Sz. Gyermekgyógyászati Klinika (SE / AOK / K); MTA-SE Lendület Nephrogenetikai Kutatócsoport (SE / AOK / K / ISZGYK)

Magyar nyelvű Absztrakt / Kivonat (Egyéb konferenciaközlemény) Tudományos
    Azonosítók
    • MTMT: 32178870
    Bevezetés: Adott gén több transzkriptuma közül vajon melyik/melyek a biológiailag aktív/ak? Melyiket tekintjük kanonikusnak? Az Ensembl, az UniProt/SwissProt és NCBI definíciói sem egyértelműek. Az amerikai irányelv szerint a null mutációt akkor tarthatjuk patogénnek, ha az ismerten biológiailag aktív transzkriptumo(ka)t érint, ha az utolsó 3’ vég felé eső ismert patogén mutációtól upstream irányban helyezkedik el, és ha olyan exonban található, amiben már korábban is leírtak patogén variánst. A kanonikus transzkriptum azonosítása tehát közvetlen klinikai jelentőséggel bír. Munkacsoportunk a podocin interallélikus interakcióinak in vivo C. elegans modelljének létrehozásán dolgozik, a podocin variáns párok patogenitásának tanulmányozása céljából. Ehhez a féreg homológ génjének (mec-2) transzkriptumait kellett feltérképeznünk. Anyagok és módszerek: Expressziós vektorokat a NEB HiFi DNA Assembly kit segítségével hoztunk létre, a különböző MEC-2 izoformákat a mec-2 saját promotere alatt fejeztettük ki, és a cbr-unc gént, mint szelekciós markert alkalmaztuk. Kettős mutáns féregtörzseket keresztezéssel hoztunk létre (unc-119 és mec-2). Az extrakromoszómális expresszió okozta mennyiségi különbségek elkerülése érdekében MosSci (Mos1-mediated Single Copy Insertion) technikát alkalmaztunk a genomi integráció elősegítésére. A vektorokat a férgekbe génpuska segítségével juttattuk be. A finomérintés reakciót vaktesztben macskabajusz segítségével vizsgáltuk. Az RNS expressziót és mennyiségeket kvalitatív és kvantitatív PCR segítségével határoztuk meg, a férgekből történt totál RNS izolálás után. Eredmények: A féregben a MEC-2 fehérje a finomérintésre adott válaszreakcióért felelős, a null mutáns féregtörzsek nem reagálnak a finomérintésre. A null mutáns féregtörzseket sikeresen transzformáltuk a korábban kanonikusként leírt MEC-2A izoformát kódoló vektorokkal. Miután nem tapasztaltunk finomérintés reakciót az RNS normál mennyisége mellett, az Ensembl adatbázisban leírt 17 izoformát kezdtük vizsgálni. Először kizártunk hetet, az expressziójuk hiánya miatt. Egy 16 kb hosszú genomi szekvenciával sikerült komplett menekítést elérnünk, mely tartalmazza hat izoforma kódoló szakaszait a fennmaradt tízből. Irodalmi adatok segítségével további izoformákat tudtunk kizárni, végül a MEC-2E izoformával sikerült elérnünk a várt menekítő hatást. Fischer-exact teszt segítségével kimutattuk, hogy a MEC-2E izoformát hordozó törzsek finomérintés reakciója nem különbözik a vad típusétól, de szignifikánsan különbözik a null mutánsétól (p<0,00001), míg a MEC-2A izoformát egy kópiában integránsan hordozó féregtörzsek finomérintés reakciója szignifikánsan elmarad a vadétól (p<0,00001), de nem különbözik a null-mutánsétól. Következtetés: A C. elegans mec-2 génjének nem az irodalomban kanonikusként leírt „A” izoformája a biológiailag aktív, hanem a C-terminális régióban 758 aminosavval hosszabb régiót kódoló „E” izoforma. A kanonikus izoforma azonosítása meghatározó a mutációk patogenitásának megítélésében, de ez állatmodell vizsgálatát teheti szükségessé.
    Hivatkozás stílusok: IEEEACMAPAChicagoHarvardCSLMásolásNyomtatás
    2025-01-20 02:37